Ausgehend von der Barriere zwischen Blutstrom und Gewebe, dem Endothel, steht im Zentrum des Forschungsprojektes die Untersuchung der aktiven Rolle der gefäßauskleidenden Zellen im wechselseitigen Zusammenspiel der Prozesse Entzündung, Gerinnung und Metastasierung.
Das vaskuläre Endothel, das unter physiologischen Bedingungen den Blutfluss aufrechterhält, kann durch verschiedenste Stimulantien, zirkulierende Blutzellen, pathophysiologische Bedingungen und auch maligne Tumorzellen aktiviert werden.

Diese Endothelzellaktivierung hat eine unmittelbare Exozytose von Weibel Palade-Körperchen (Weibel Palade bodies, WPB), langgestreckten Vesikeln im Zytoplasma, zur luminalen Seite zur Folge. Dadurch kommt es innerhalb weniger Sekunden zu einem Wechsel von einem primär antientzündlichen, gerinnungshemmenden in einen proinflammatorischen, prokoagulatorischen Zustand des betroffenen Endothelbereiches. In den WPB ist neben einer Vielzahl von Mediatoren der Entzündung, wie beispielsweise P-Selektin, Interleukin-8, Osteoprotegerin und Eotaxin-3, auch der von Willebrand-Faktor (VWF) als zentrales Protein der Blutgerinnung kolokalisiert. Diese Aktivierung, die mit der Sekretion des im Blutfluss netzartig gestreckten Proteins VWF auf der Endotheloberfläche einhergeht, steht im Fokus der folgend aufgeführten Projekte

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Das Adhäsions- und Migrationsverhalten von Tumorzellen auf aktiviertem Endothel und die beiderseitigen Wechselwirkungen mit VWF unter Flussbedingungen stehen im Zentrum dieses Teilprojektes. Die exakt quantifizierbare Simulation der physikalischen Bedingungen im Mikromilieu der tumoraktivierten Endothelzellen ist hierbei von besonderer Bedeutung. Zur Kultivierung der Endothelzellen unter Flussbedingungen und direkten Beobachtung der Tumor-Endothel-Interaktion kommen verschiedene Flusskammersysteme zum Einsatz. In diesen „künstlichen Blutgefäßen“ sind zudem spezielle und pathophysiologische Strömungsbedingungen (Stenosen, Bifurkationen, turbulente Strömungen) simulierbar.
Ein direktes Live Cell Imaging Imaging unter Verwendung hochauflösender Mikroskopiemethoden wie der diferentiellen Interferenzkontrastmikroskopie (DIC), der Reflexions-Interferenz-Kontrastmikroskopie (RICM) und fluoreszenzmikroskopischer Verfahren erlaubt eine Analyse der Wechselwirkungen auch unter Verwendung von Patientenvollblut.

Angesichts vielversprechender klinischer Möglichkeiten der Nanotechnologie müssen auch potentielle Expositionsrisiken für Mensch und Umwelt sorgfältig überprüft werden. Natürlich vorkommende und synthetische Nanopartikel gelangen primär per inhalationem, aber auch über den Gastrointestinaltrakt und die Haut durch Endothelzellen der Kapillaren in den menschlichen Blutkreislauf. Trotz verschiedener toxikologischer Studien bleibt das Gefährdungspotential so aufgenommener Nanopartikel weitgehend ungeklärt. Ziel dieses Teilprojektes ist es daher, die Wechselwirkungen für den Menschen relevanter Silica- und Eisenoxid Partikel mit definierten Eigenschaften, wie Durchmesser und Oberflächenbeschichtung, mit dem vaskulären Endothel eingehend zu studieren. Dies beinhaltet Untersuchungen der Auswirkungen auf die biologische Funktionalität, zelluläre Signaltransduktion, Induktion von Inflammationsreaktionen und auf das koagulatorische System. Methodisch stehen dabei standardisierte Zytotoxizitätstests und molekularbiologische sowie zellbiologische Assays an einem etablierten in vitro Modell, basierend auf humanen Endothelzellen (HUVECs), im Mittelpunkt. Ferner wird die Aufnahme, subzelluläre Lokalisation und Prozessierung fluoreszenzmarkierter Nanopartikel durch Konfokalmikroskopie und hochauflösende mikroskopische Verfahren wie der Rasterkraftmikroskopie (AFM) ermittelt.

Biologische Effekte von therapeutisch nutzbaren Nanopartikeln für die Krebstherapie werden neben den in vitro Versuchen auch in murinen Modellen direkt mit in vivo Experimenten validiert. Neben makroskopischen Größen wie dem Tumorwachstum und der Metastasierung in Lymphknoten, Lunge und Gehirn, welche wir immunhistologisch aufarbeiten, verwenden wir ebenfalls verschiedene Verfahren der intravitalen Bildgebung um die Biodistribution von Nanopartikeln im Organismus und die therapeutische Anreicherung im Tumor visuell nachzuweisen.

Die atopische Dermatitis ist eine entzündliche Erkrankung der Haut. Obwohl die Ursachen der Krankheitsentstehung sehr komplex sind, wird davon ausgegangen, dass die Beeinträchtigung der physikalischen Hautbarriere maßgeblich den Krankheitsverlauf bestimmt. Die physikalische Barriere ist im Wesentlichen der obersten Hautschicht, der Epidermis, zugeordnet. Die Epidermis wird hauptsächlich aus Keratinozyten gebildet, welche im Verlauf ihrer Differenzierung eine Vielzahl von Molekülen produzieren, die eine Schlüsselrolle in der Bildung der physikalischen Hautbarriere übernehmen. Ist die Produktion einzelner Barrierekomponenten gestört kommt es zu vermehrter Penetration pathogener und allergener Substanzen, was zu einer kontinuierlichen Aktivierung des Immunsystems und somit zu einer chronischen Entzündungsreaktion der Haut führt. Neusten Erkenntnissen zur Folge tritt bei einem großen Protzentsatz der Erkrankten eine Mutation innerhalb des Filaggrin-Gens auf; des Weiteren scheint auch eine beeinträchtigte Synthese von Hautlipiden ursächlich an der Krankheitsentstehung beteiligt zu sein.
Zur Verbesserung der gegenwärtigen Therapieoptionen streben wir eine detaillierte morphologische und funktionelle Charakterisierung der Epidermis an. Zur nicht-invasiven Untersuchung entzündlicher Hautzustände am Patienten konnten in der Vergangenheit zwei vielversprechende Methoden der Nanotechnologie in unserem Labor zur Untersuchung der menschlichen Haut etabliert werden, die Rasterkraftmikroskopie und die Multiphotonentomographie.

Die Wundheilung ist ein komplexer Prozess, der in drei einander überlappenden Phasen verläuft:

1) Entzündungsphase (Abwehr)
2) Regenerationsphase (Gewebewachstum)
3) Remodellierungsphase (Narbenbildung)

Die erste Phase dient dem akuten Verschluss durch Koagulation, der Reinigung der Wunde, der Bildung einer provisorischen Matrix und dem Start der Wundregeneration. Dies wird erreicht durch die Aktivierung von Blutplättchen und Blutgerinnungsfaktoren, durch das Einwandern von Makrophagen und Neutrophilen und die Abgabe von reaktiven Sauerstoffspezies sowie durch das Ausschütten von proinflammatorischen Cytokinen und Wachstumsfaktoren.

In der zweiten Phase regenerieren sich sowohl Dermis als auch Epidermis durch Proliferation und Migration von Keratinozyten und Fibroblasten, dem Wachstum von neuen Blutgefäßen und der Bildung von extrazellulärer Matrix. In dieser Phase wird die Wunde durch Granulationsgewebe aufgefüllt und durch ein neues Epithel und damit einer provisorischen Barriere verschlossen.

Die dritte Phase dient der weitgehend vollständigen Wiederherstellung der Funktionalität der Haut (Barrierefunktion, Reißfestigkeit, Sensitivität). Sie ist gekennzeichnet durch einen Umbau der extrazellulären Matrix, der Verminderung von Myofibroblasten und Blutgefäßen durch Apoptose und der Atrophie der hypertrophen Epidermis. Normalerweise führt die Remodellierung zu einer mehr oder weniger ausgeprägten Narbe.

Geraten diese stark kontrollierten und gut aufeinander abgestimmten Vorgänge aus dem Gleichgewicht, entstehen chronische Wunden. Von einer chronischen Wunde spricht man, wenn diese nicht innerhalb von 4-12 Wochen Heilungstendenzen zeigt, obwohl sie lege artis behandelt wurde. Ursachen für chronische Wunden sind venöse oder arterielle Gefäßerkrankungen (z.B. Ulcus cruris venosum), metabolische Erkrankungen wie Diabetes mellitus (z.B. diabetisches Fußsyndrom), eine falsche Lagerung des Körpers (Dekubitus, Ulcus) sowie immunologische Erkrankungen (z.B. Pyoderma gangränosum). Darüber hinaus können Infektionen ursächlich oder verstärkend für chronische Wunden sein.

Wir interessieren uns besonders für die Rolle von Tight Junctions (TJ) in der Wundheilung und konnten die Bedeutung von TJ Proteinen während der Wundheilung zeigen [s. Abb. Die Rolle von Tight Junctions in der Wundheilung.jpg].

Darüber hinaus ist ein Schwerpunkt unserer Arbeit die Entwicklung von Wundheilungsmodellen (porcine und humane ex vivo Wundheilungsmodelle für flache und tiefe Wunden, diabetische Wunden und infizierte Wunden) [s. Abb. Wundmodelle] zur Untersuchung von Grundlagen der Wundheilung aber auch zur Testung der wundheilungsfördernden und barrierestärkenden Wirkung von verschiedenen Substanzen, Formulierungen und Wundauflagen.

Die Haut ist eine essentielle Barriere für unseren Körper. Sie verhindert das Eindringen von Pathogenen, Allergenen und sonstigen Fremdstoffen sowie den Verlust von Wasser, Ionen und Nährstoffen.
Die Hautbarriere setzt sich aus verschiedenen Komponenten zusammen: den mechanischen Barrieren des Stratum corneums und der Tight Junctions (TJs), der Mikrobiom-Barriere, der immunologischen Barriere bestehend aus Immunzellen und Cytokinen und der chemischen Barriere bestehend aus antimikrobiellen Peptiden. Diese Barrieren stehen in Interaktion miteinander, die Veränderung einer Komponente führt zur Reaktion der anderen Komponenten.

Im Zentrum unseres Interesses liegen die TJs und ihre Interaktion mit den anderen Hautbarrieren. TJs sind Zell-Zellverbindungen, die im Stratum granulosum eine Barriere ausbilden. Der Verlust des TJ Proteins Claudin-1 führt in Mäusen am ersten Tag nach Geburt zum Tod aufgrund von starker Dehydratation über die Haut. TJs werden sowohl in der interfollikulären Epidermis, als auch im Haarfollikel gefunden. Ihr Aufbau ist äußerst komplex mit einer Vielzahl von Transmembran- und Plaque Proteinen, die zum einen die Dichtigkeit der TJs bestimmen und regulieren, zum anderen Signale in die Zelle weiterleiten und somit am “cell signaling“ beteiligt sind. Wir und andere konnten in den letzten Jahren zeigen, dass TJs mit dem Stratum corneum, dem Mikrobiom, der immunologischen Barriere und den antimikrobiellen Peptiden interagieren [s. Abb TJ_und_Stratum_corneum_1]. Darüber hinaus spielen TJ-Proteine eine Rolle in Differenzierung, Proliferation, Migration, Apoptose und Zell-Zell-Adhäsion von Keratinozyten. Diese Funktionen werden, zumindest zum Teil, von TJ-Proteinen außerhalb von TJ-Strukturen vermittelt, sind also TJ-Struktur-unabhängig.

Die Hautbarriere spielt eine wichtige Rolle bei Erkrankungen. Es ist mittlerweile beispielsweise bekannt, dass bei der Atopischen Dermatitis (Neurodermitis) ein Hautbarrieredefekt, der verschiedene Ursachen haben kann, zu einem Teufelskreis der Erkrankung führt: Das Eindringen von Allergenen und die Besiedelung/Infektion mit Pathogenen aufgrund der verminderten Barrierefunktion führt zu einer (überschießenden) Reaktion des Immunsystems mit einer kutanen Entzündung, die wiederum zu einer weiteren Verschlechterung der Hautbarriere führt. Wir konnten zeigen, dass Tight Junctions dabei eine zentrale Rolle spielen [TJ_und_Stratum_corneum_2]. Darüber hinaus sind TJs auch in die Pathogenese bei Hautinfektionen involviert, ein Gebiet, das wir auch in Zukunft weiter vertiefen wollen

Neben des negativen Einflusses einer beeinträchtigten Hautbarriere bei Erkrankungen gibt es aber auch Situationen, in denen die Hautbarriere bewusst beeinträchtigt werden soll, nämlich bei der topischen Applikation von Arzneimitteln („drug delivery“). Ein besseres Verständnis der TJ Barriere im Speziellen und ihrer Interaktion mit anderen Barrieren wird in Zukunft helfen, Formulierungen für die topische Applikation zu optimieren